采血是动物实验的基本操作之一，通过采集动物的血液进行检测，从而更好的观察其生理生化的变化。我们以小鼠和大鼠为例，向大家介绍实验室内常用的四种采血方法：
1．尾静脉采血法
将鼠放入固定器内，酒精棉球反复擦拭鼠尾，使鼠尾静脉充分充血。剪刀剪去鼠尾尖（小鼠1~2 mm，大鼠5~10 mm），血即可自尾尖流出，滴入备用试管或直接用吸管吸取。也可用手轻轻从尾根部向尾尖部挤几下，使血液流入备用的收集管内。也可交替切割尾静脉搏取血，用锋利的刀片在尾巴上切一小口，切破一段尾静脉，静脉血即可由伤口流出。取血后用干棉球或使用止血剂（如硝酸银、6%液体火棉胶）压迫止血。
此方法操作简单，适用于需血量少的连续多次采血，如血糖或血常规的动态检测。但采血量较少，小鼠约0.1 mL，大鼠约0.3~0.5 mL，且按摩鼠尾有可能增加溶血的风险。
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2．眼眶静脉丛采血法
将鼠麻醉后侧卧在动物台上，左手拇指和食指压迫动物的颈部同时将皮肤向后拉（注意避免用力过度压迫气管），使眼球外突，眼眶后静脉丛充血。右手拿一毛细管（建议采用0.5*100 mm规格的毛细管，使用前可折成小段，每段约为3~4 cm），与鼠平面成30°~45°的夹角沿内眦插入内眼角，划入眼球后方，轻轻向眼底方向刺入。刺入深度小鼠约2~3 mm，大鼠约4~5 mm。当感到阻力时立即停止进针，转180°使斜面对着眼眶后界，即有血液留出。若不行，将针退出约0.1~0.5 mm，血液会通过毛细作用进入毛细管内。采血结束后，立即拔出采血管，松开左手，用干棉球压住眼眶止血。
此方法左右眼可交替使用，采血量中等，小鼠约0.2~0.3 mL，大鼠约0.4~0.6 mL。虽可反复采血，但易损伤眼球，采血后至少需要10天的组织修复过程，血液中可能混有眼窝内的组织液和腺体分泌物，对血样要求高的研究应谨慎使用。.png)
3. 颌下静脉采血法
将鼠侧卧，固定头部，对采血部位消毒，采血部位位于头部下颌骨后方咬肌边缘颌下静脉丛血管处（大致在嘴角沿线与外眼角线相交处，会发现一个无毛的小点，有点像酒窝，基本位于嘴角远端稍低下巴线）。将针垂直扎入采血部位，穿刺时可以感觉到下颌骨，尽量避免刺穿下颌骨。拔出针头后血液流出，可使用毛细管收集也可直接滴入采血管内。为方便采血，可使小鼠头部低于心脏高度。采血结束后，立即用灭菌干棉球压迫止血。
此方法是国际上最新、最简单快捷、最人道的采血方法，无需麻醉，采血时间短，对鼠损伤小，动物恢复快，符合3R原则，每次采血量约0.2~0.5 mL，适用于中等需血量的血液指标的连续监测。注意血液由下颌部被毛处流出，避免粘连毛发污染血液。
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4. 心脏取血法
将鼠麻醉后仰卧固定在动物台上，剪去胸前部位的被毛，用碘酒或酒精消毒，右手持注射器（小鼠采用4~5号针头，大鼠采用6~7号针头）在左侧第3~4肋间心搏最强处（一般位于两上肢连线下0.5 cm中线稍偏左）进针刺入心内，血液自动流入注射器时便可缓慢回抽，再转移至采血管内。也可麻醉后切开大小鼠胸腔，暴露心脏，将注射器直接刺入右心室抽取血液。
此方法适用于需血量大的实验终末期的动物采血，抽血快，血液不易凝集，小鼠采血量约0.5~0.8 mL，大鼠采血量约1~1.5 mL。注意要迅速而直接的插入心脏，否则心脏将从针尖处滑脱；如第一次没刺准，不要在心脏周围乱探，以免损伤心肺；抽血时应缓慢而稳定地抽血，否则太多的真空反而使心脏塌陷血液不易流出。
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